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通用外泌體分離試劑盒(SEC法)
英文名:Universal Exosome Isolation Kit
貨號(hào):P-CA-503
價(jià)格:¥5680 ¥¥¥
- 1Box(3EA)
產(chǎn)品概述
產(chǎn)品描述 | 本試劑盒基于分子排阻色譜原理,根據(jù)被分離組分分子大小差異進(jìn)行外泌體的分離。具有操作簡(jiǎn)便、高純度和高回收率等優(yōu)點(diǎn),特別適用于大體積樣本中的外泌體分離。分離的外泌體可用于WB分析、NTA或納米流式粒徑分析、電鏡檢測(cè)、組學(xué)研究、細(xì)胞和動(dòng)物功能研究等。 |
分離方法 | 尺寸排阻色譜法(SEC) |
產(chǎn)品優(yōu)勢(shì) | 1. 樣本體積兼容范圍廣 0.1-3 mL樣本體積都兼容; 2. 純化外泌體純度高 可直接用于鑒定檢測(cè)或外泌體示蹤和功能研究等; 3. 操作簡(jiǎn)單 重力柱模式無(wú)需專業(yè)的純化設(shè)備,對(duì)場(chǎng)地設(shè)備要求少,時(shí)間短; 4. 回收率高 可自由選餾分管蛋白污染程度低,分離出的組分無(wú)蛋白污染。 |
運(yùn)輸條件 | 冰袋運(yùn)輸 |
保存條件 | 2-30℃或2-8℃ |
保質(zhì)期 | 18個(gè)月 |
產(chǎn)品組分
規(guī)格 | 組分名稱 | 含量 | 保藏溫度 |
1Box (3EA) | Exosome Purification Column (30 mL) | 3 EA | 2-8℃ |
1Box (3EA) | Column Adapter (30 mL) | 3 EA | 2-30℃ |
自備儀器耗材
使用方法
1. 樣品預(yù)處理
1) 去除細(xì)胞。4℃,300 g,離心5 min,轉(zhuǎn)移上清到新的離心管;
注意:對(duì)無(wú)細(xì)胞的樣品,可以跳過(guò)此步驟。
2) 去除細(xì)胞及細(xì)胞碎片。4℃,2000 g,離心10 min,轉(zhuǎn)移上清到新的離心管;
3) 去除大體積顆粒。步驟 2)得到的上清,4℃,14000 g,離心30 min,轉(zhuǎn)移上清到新的離心管。
2. 純化柱預(yù)處理
1) 提前將純化柱(Exosome Purification Column (30 mL))安裝在純化柱固定器(Purification Column Stand)上,純化柱下面放置廢液槽。放置于室溫30 min以上,恢復(fù)室溫;
注意:純化柱需充分平衡至室溫(18-25℃),溫度過(guò)低或過(guò)高,都會(huì)影響外泌體分離效果。
2) 檢查純化柱下端是否充滿液體。如果純化柱下端無(wú)空氣,可以跳過(guò)該步驟;若純化柱下端存在空氣,將純化柱倒置,打開(kāi)下端密封帽,用移液器或注射器取水或20%乙醇頂出空氣,在密封帽中充滿水或20%乙醇,再蓋上密封帽,放回固定器上;
3)先打開(kāi)純化柱頂蓋,再打開(kāi)下端的密封帽,棄去純化柱上的封柱液(可直接倒掉或者用移液器吸?。?,將適配器(Column Adapter (30 mL))與純化柱連接,并從頂部加入加2倍柱體積(60 mL)PBS平衡純化柱,至下方?jīng)]有溶液流出。清洗過(guò)程中,純化柱的頂部篩板必須始終保持濕潤(rùn)。沖洗完成后,蓋上底端密封帽,斷開(kāi)適配器,加入3 mL PBS備用。
a. 注意要先打開(kāi)純化柱上蓋,再打開(kāi)下端的密封帽,否則空氣將進(jìn)入純化柱中,影響外泌體分離效果。
b. 在整個(gè)外泌體分離純化過(guò)程中,純化柱的頂部篩板必須始終保持濕潤(rùn),否則影響外泌體分離效果。
c. 需要向純化柱中加入大體積溶液時(shí),可以將適配器與純化柱連接,將溶液加入到適配器中。
d. PBS推薦新鮮配制并經(jīng)0.2 μm濾膜過(guò)濾,或采購(gòu)商業(yè)化無(wú)菌的PBS,避免微生物或顆粒物污染。PBS溶液使用前,必須平衡到室溫,否則純化柱中可能出現(xiàn)大量氣泡,影響外泌體分離效果。
3. 分離外泌體
1) 樣品上樣。移除純化柱中的PBS,在上方加入3 mL樣本;樣本不足3 mL,可用PBS補(bǔ)至3 mL,混勻后上樣。取下純化柱底部密封帽,等待樣本全部進(jìn)入純化柱內(nèi)后,再加PBS;
a. 如果樣品體積超過(guò)3 mL,建議試用50 kDa超濾管濃縮樣品至3 mL,注意濃縮體積不超過(guò)20倍。超濾濃縮方法詳見(jiàn)超濾管的說(shuō)明書(shū)。
b. 對(duì)于高粘度樣本,如血漿、血清、高粘度胸腹水等樣本,可取1.5 mL樣本,用PBS稀釋至3 mL,混勻后上樣。
c. 必須待樣品全部進(jìn)入篩板后,再加入PBS,避免樣品被稀釋影響分離效果。
2) 外泌體分離。先在純化柱下方準(zhǔn)備好1.5mL離心管,然后在純化柱上方加入1 mL PBS。待下方收集到1 mL餾分后,可加下一次1 mL PBS,換新的1.5 mL離心管收集。根據(jù)流出順序分別標(biāo)記餾分管編號(hào)。
3) 外泌體收集。收集8、9、10、11、12號(hào)餾分管即可獲取外泌體,其中9、10、11號(hào)餾分管的外泌體濃度更高。收集液可直接測(cè)定外泌體顆粒數(shù)和蛋白濃度。
4) 外泌體濃縮。測(cè)定收集外泌體的顆粒濃度和蛋白濃度,根據(jù)后續(xù)實(shí)驗(yàn)要求,決定是否對(duì)外泌體收集液進(jìn)行濃縮。如濃縮,建議使用MWCO 50 kDa的超濾管,4000 g離心濃縮到目的體積即可。
4. 純化柱維護(hù)
1) 收集完所有餾分后,將適配器與純化柱連接,并從頂部加入至少2倍柱體積(60 mL)PBS清洗純化柱,至下方?jīng)]有溶液流出。
2) 再加1.5倍柱體積(45 mL)的20%乙清洗純化柱,至下方?jīng)]有溶液流出。
3) 最后取下適配器,向純化柱中加入5 mL 20%乙醇的封閉液,安裝純化柱頂蓋,然后在密封帽中充滿20%乙醇,蓋到純化柱下端出口,置于4℃直立保存。
操作注意事項(xiàng)
1. 新購(gòu)買(mǎi)或使用后的純化柱,上篩板和白色瓊脂糖微球之間可能會(huì)出現(xiàn)一定的空隙,這是儲(chǔ)存和使用過(guò)程中凝膠沉降造成的,并不影響純化柱的性能,將上篩板向下推至無(wú)空隙即可正常使用;
2. 純化柱保存在封閉液中,封閉液為20%乙醇。20%乙醇建議現(xiàn)配現(xiàn)用,同時(shí)經(jīng)0.2 μm濾膜過(guò)濾、超聲或真空脫氣,避免造成純化柱出現(xiàn)大量氣泡,影響分離效果;
3. 每次純化柱使用前需要使用無(wú)菌并平衡至室溫的PBS清洗。PBS建議現(xiàn)配現(xiàn)用,同時(shí)經(jīng)0.2 μm濾膜過(guò)濾、超聲或真空脫氣,避免造成純化柱出現(xiàn)大量氣泡,影響分離效果;
4. 純化柱中間不能有氣泡,使用前后需認(rèn)真檢查,避免影響實(shí)驗(yàn);
5. 純化柱可以反復(fù)利用,但是多次使用會(huì)影響效果,建議重復(fù)使用不超過(guò)5次;
6. 當(dāng)分離的外泌體進(jìn)行NGS或者其他組學(xué)分析時(shí),為避免交叉污染,建議每個(gè)樣品使用一支新的純化柱。
FAQs
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A:
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