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細(xì)胞學(xué)堂 | 大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的分離提取

來(lái)源:Pricella  瀏覽量:  發(fā)布時(shí)間:2024-02-20 11:00:00



骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow mesenchymal stem                                cells,BMSCs)來(lái)源于中胚層,是具有多分化潛能的細(xì)胞。細(xì)胞生物學(xué)表明,BMSCs具有較強(qiáng)的增殖能力和多向分化潛能。在不同誘導(dǎo)條件下,可向中胚層細(xì)胞如脂肪細(xì)胞、成骨細(xì)胞、肌細(xì)胞等分化。BMSCs                                是理想的種子細(xì)胞來(lái)源之一,在細(xì)胞替代治療、基因治療及組織器官再造中具有重要的臨床應(yīng)用價(jià)值。



本期細(xì)胞學(xué)堂為大家整理了大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞分離提取的方法、注意事項(xiàng)及鑒定指標(biāo),幫助您快速上手開(kāi)展實(shí)驗(yàn)。




分離提取步驟


骨髓取材

將大鼠斷頸處死后, 置于75%醫(yī)用酒精內(nèi)浸泡5~10 min,消毒后將動(dòng)物轉(zhuǎn)運(yùn)至超凈工作臺(tái)內(nèi)。無(wú)菌分離雙側(cè)股骨和脛骨,用新的剪刀鑷子清除股骨脛骨周?chē)∪饨M織;保持骨頭完整,留取純凈骨頭,將組織轉(zhuǎn)移至新的含有PBS的培養(yǎng)皿內(nèi),剪去骨干的兩端,                    暴露骨髓腔;取注射器,吸取培養(yǎng)基,從骨頭一端插針,沖洗骨髓(至骨頭發(fā)白透亮),反復(fù)吹打制成單細(xì)胞懸液。



分離方法

BMSCs常見(jiàn)的分離方法有密度梯度離心法貼壁法以及免疫磁珠分選法,大家可以根據(jù)自己實(shí)驗(yàn)室條件來(lái)選擇合適的分離方法。

1

密度梯度離心法

將裝有大鼠骨髓液的15 mL離心管,1500                        rpm離心5 min;棄上清,用完全培養(yǎng)基重懸沉淀;將培養(yǎng)基重懸的細(xì)胞懸液緩慢滴加到Percoll分離液(用PBS稀釋?zhuān)┥戏?,形成密度梯度分離液;2000~2500                        rpm離心25 min,吸取中間層的白色霧狀細(xì)胞層,加入PBS清洗細(xì)胞,1800                        rpm離心5 min;棄上清,保留細(xì)胞沉淀;用細(xì)胞完全培養(yǎng)基重懸沉淀,將細(xì)胞懸液按1×106/mL密度接種于T25瓶中,于37℃,5%CO2恒溫培養(yǎng)箱中靜置培養(yǎng)。首次2                d換液,棄去未貼壁細(xì)胞, 此后每2~3 d換液一次;待細(xì)胞融合達(dá)80%后, 用胰酶消化1~2 min后傳代培養(yǎng)。

2

貼壁法

也稱(chēng)全骨髓培養(yǎng)法或一步法。將收集的骨髓懸液經(jīng)200目篩網(wǎng)過(guò)濾后,用完全培養(yǎng)基制成單細(xì)胞懸液;培養(yǎng)48                        h首次換液,棄去未貼壁細(xì)胞;此后每2~3                        d換液一次,觀察細(xì)胞的生長(zhǎng)及融合程度,待細(xì)胞融合80%以上后開(kāi)始傳代培養(yǎng)。

3

流式細(xì)胞儀或免疫磁珠分選法

免疫磁珠法和流式細(xì)胞儀分選法通過(guò)識(shí)別細(xì)胞表面特異性抗原分離細(xì)胞,可獲得純度較高的細(xì)胞,但對(duì)細(xì)胞的活性影響較大,獲得的細(xì)胞量少,需要特殊的儀器,實(shí)際應(yīng)用受限。





注意事項(xiàng)

取材嚴(yán)格無(wú)菌操作。除基本的無(wú)菌要求外,                                        在剪取大鼠的雙下肢及剝離皮毛后,應(yīng)更換取材器械,避免取材和分離骨髓間的交叉污染;

培養(yǎng)基營(yíng)養(yǎng)要充足。血清濃度可摸索調(diào)整,培養(yǎng)時(shí)可額外添加生長(zhǎng)因子;

采用密度梯度離心法時(shí),                                        Percoll分離液最好是現(xiàn)配現(xiàn)用。此外,分離液和細(xì)胞懸液的比例應(yīng)合適,一般采用                                        1∶1;

注意細(xì)胞接種密度、換液時(shí)間。密度過(guò)低會(huì)影響細(xì)胞貼壁、融合。不同的操作方法中換液、傳代時(shí)間各異,根據(jù)細(xì)胞生長(zhǎng)狀況及時(shí)調(diào)整換液、傳代時(shí)間。





鑒定指標(biāo)

01

細(xì)胞形態(tài)學(xué)觀察

剛分離提純的原代細(xì)胞形態(tài)呈圓形,大小不一,漂浮于培養(yǎng)液中(圖1)。經(jīng)純化貼壁后可見(jiàn),細(xì)胞呈成纖維樣緊密排列,漩渦樣生長(zhǎng),胞核大、清晰、呈長(zhǎng)梭形,細(xì)胞形態(tài)趨于統(tǒng)一(圖2),其形態(tài)符合BMSCs                        的貼壁形態(tài)。

大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞剛分離,呈圓形

圖1 大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞剛分離,呈圓形


普諾賽實(shí)驗(yàn)室提純的大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞

圖2 普諾賽實(shí)驗(yàn)室提純的大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞


02

表面標(biāo)志物

目前使用較多的是CD90、CD29、CD44等陽(yáng)性表達(dá)指標(biāo)。

普諾賽實(shí)驗(yàn)室提取的大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞CD90表達(dá)

普諾賽實(shí)驗(yàn)室提取的大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞CD90表達(dá)



參考文獻(xiàn)

[1]Clavin, N. W., Fernandez, J., Sch?nmeyr, B. H., Soares, M. A., et al. Fractionated doses                            of ionizing radiation confer protection to mesenchymal stem cell pluripotency. Plastic and                            reconstructive surgery,2008;122(3),739–748. https://doi.org/10.1097/PRS.0b013e318180edaa

[2]Mushahary, D., Spittler, A., Kasper, C., et al. Isolation, cultivation, and                            characterization of human mesenchymal stem cells. Cytometry. Part A : the journal of the                            International Society for Analytical Cytology,2018;93(1),19–31.                            https://doi.org/10.1002/cyto.a.23242

[3]Li, X., Zhang, Y., & Qi, G. Evaluation of isolation methods and culture conditions                            for rat bone marrow mesenchymal stem cells. Cytotechnology, 2013;65(3), 323–334.                            https://doi.org/10.1007/s10616-012-9497-3

[4]段長(zhǎng)偉,柴彥杰,趙疆東,等.骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞分離與培養(yǎng)技術(shù)[J].寧夏醫(yī)學(xué)雜志,2021,43(6):573-576.

[5]宮宇,王鴻飛,夏海軍.全骨髓貼壁接觸培養(yǎng)SD大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞[J].中國(guó)組織工程研究,2014,18(1):51-56.




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